Nguyên lý của MSC (Tế bào gốc trung mô)
Tác dụng của cấy ghép tế bào gốc trung mô (MSC) đối với bệnh cơ tim do tiểu đường.
(a) Tế bào gốc trung mô (MSC) làm tăng hoạt hóa MMP-2 và ức chế hoạt hóa MMP-9, do đó làm giảm quá trình tái cấu trúc tim. (b) MSC sản sinh VEGF, IGF-1, AM và HGF, kích thích quá trình hình thành cơ và mạch máu trong cơ tim bị tổn thương. (c) Thông qua quá trình biệt hóa thành tế bào cơ tim và tế bào nội mô mạch máu, MSC cải thiện sự tưới máu cơ tim và quá trình tái tạo cơ tim.
Viết tắt
AM (Adrenomedullin), HGF (Yếu tố tăng trưởng tế bào gan), IGF-1 (Yếu tố tăng trưởng giống insulin-1), MMP (Matrix Metalloproteinase), MSC (Tế bào gốc trung mô), VEGF (Yếu tố tăng trưởng nội mô mạch máu)
Hiệu quả của phương pháp điều trị MSC đối với bệnh lý thần kinh ngoại biên do tiểu đường
Bốn tuần sau khi tiêm bắp, tế bào gốc trung mô (MSC) lắng đọng trong không gian kẽ của các sợi cơ thông qua việc sản sinh bFGF và VEGF, kích thích sự hình thành mạch máu và hỗ trợ tái tạo tế bào thần kinh, dẫn đến cải thiện bệnh lý thần kinh ngoại biên do tiểu đường.
Viết tắt
bFGF (yếu tố tăng trưởng nguyên bào sợi cơ bản), MSC (tế bào gốc trung mô), VEGF (yếu tố tăng trưởng nội mô mạch máu)
Điều trị toàn thân bằng tế bào gốc trung mô
Việc tiêm tế bào gốc trung mô toàn thân có thể gây ra các tác dụng cuối cùng (nội tiết) hoặc cục bộ (cận tiết), bao gồm cả các tác dụng qua trung gian tế bào.
1) Yếu tố tăng trưởng nội mô mạch máu (VEGF), yếu tố tăng trưởng giống insulin 1 (IGF-1), protein thu hút bạch cầu đơn nhân 1 (MCP1), yếu tố tăng trưởng nguyên bào sợi cơ bản (bFGF), interleukin 6 (IL-6)
2) Sự tăng sinh và biệt hóa tế bào gốc: Yếu tố tế bào gốc (SCF), yếu tố ức chế bệnh bạch cầu (LIF), yếu tố kích thích tạo cụm đại thực bào (MCSF), yếu tố dẫn xuất từ tế bào mô đệm 1 (SDF1), angiopoietin 1, activin A
3) Ức chế xơ hóa: yếu tố tăng trưởng tế bào gan (HGF), bFGF, adrenomedullin (ADM)
4) Ức chế apoptosis: VEGF, HGF, IGF1, yếu tố tăng trưởng chuyển đổi (TGF) β, bFGF, yếu tố kích thích tạo cụm tế bào bạch cầu hạt-đại thực bào (GM CSF), activin A, thrombospondin 1. Các tác dụng qua trung gian miễn dịch bao gồm những điều sau đây (5-8):
5) Ức chế tế bào T và B: Kháng nguyên bạch cầu người G5 (HLA G5), HGF, nitric oxide synthase cảm ứng (iNOS), indoleamine 2,3-dioxygenase (IDO), prostaglandin E2 (PGE2), bFGF, TGFβ
6) Kích thích sự biệt hóa và tăng sinh của tế bào T điều hòa (Tregs) thông qua biểu hiện TGFβ.
7) Ức chế tế bào tiêu diệt tự nhiên (NK) bằng cách tiết ra IDO, PGE2 và TGFβ.
8) Ức chế sự trưởng thành của tế bào dendrit (DC) bằng cách tiết PGE2.
Hình "Stem Cell Res Ther" được Carrión và Figueroa tái bản. Ngày 11 tháng 5 năm 2011; 2(3):23.
Lưu ý: Mũi tên đỏ...kích thích, mũi tên đen...ức chế, mũi tên không móc...ức chế trực tiếp
Viết tắt
iDC (tế bào dendritic chưa trưởng thành), IL (interleukin), HGF (yếu tố tăng trưởng tế bào gan), TGF-β (yếu tố chuyển đổi tăng trưởng-β), PGE-2 (prostaglandin E2), IDO (indoleamine 2,3-dioxygenase), NO (nitric oxide), PD-L1 (ligand chết theo chương trình 1), hMSC (tế bào gốc trung mô người), Treg (tế bào T điều hòa), Th (tế bào T hỗ trợ), CTL (tế bào T gây độc), mDC (tế bào dendritic trưởng thành), PD-1 (protein chết tế bào theo chương trình 1), PMN (bạch cầu đa nhân), NK (tế bào NK)
Hấp thu cục bộ ở vùng trước tâm thất của tim động vật
Đây là hình ảnh mặt cắt dọc (trái) và mặt cắt ngang (phải) của ảnh SPECT/CT kết hợp từ ngày 1 (a), ngày 2 (b) và ngày 7 (c). Tại thời điểm chụp ảnh cuối cùng (ngày 5-8), vùng đỉnh của quá trình hấp thụ MSC (mũi tên) được hiển thị trong sơ đồ cấu trúc mặt cắt ngang cho ba con vật tiêu biểu.
Sự phân bố đỉnh phía trước điểm này vẫn hiện diện bất kể có quan sát thấy điểm nóng ban đầu hay không. (Chỉ mũi tên màu vàng ở hình f)
Đặc điểm của các tế bào mô đệm tủy xương được phân lập
Các tế bào được nuôi cấy từ tủy xương sau khi phân tách theo mật độ, và được thể hiện như sau: (A) 48 giờ sau khi cấy và (B) 10 ngày sau khi cấy. (C) Việc đếm tế bào trong dịch nuôi cấy cho thấy sự làm giàu của các tế bào được nuôi cấy này.
Kết quả thu được vào ngày thứ 2, 5 và 14 của quá trình nuôi cấy bằng cách sử dụng kháng thể SH2 và SH3 được tạo ra chống lại các dấu hiệu bề mặt. (11)
Vào ngày thứ 14, các tế bào đạt độ đồng nhất 95–99% và âm tính với các kháng nguyên tế bào tạo máu CD14, CD34 (Becton-Dickinson) hoặc CD45 (Pharmingen). (D) Tính đồng nhất và khả năng tái lập của quy trình phân lập đã được chứng minh bằng xét nghiệm tế bào dịch.
